что такое вульфа у кошек

Фейсконтроль для кошки: разработана шкала диагностики боли у животных

Канадские ветеринары провели испытания разработанной ими шкалы оценки мимики кошек, которая позволяет человеку даже без специальной подготовки определить, испытывает ли животное в данный момент болевые ощущения. Чтобы ответить на этот вопрос, нужно оценить внешний вид кошки по пяти критериям: положение ушей, глаз, усов, головы и напряженность морды. Тесты подтвердили, что благодаря этой простой системе каждый владелец может диагностировать проблемы со здоровьем своего питомца практически с той же точностью, что и профессионал.

Читать по мордам

Группа ученых факультета ветеринарной медицины Университета Монреаля разработала шкалу оценки мимики кошек (Feline Grimace Scale), которая служит для диагностики боли у животных. Метод позволяет определить, испытывает ли кошка болезненные ощущения, на основе внешнего осмотра без использования какого-либо оборудования. Он может применяться как владельцами домашних питомцев, так и профессиональными ветеринарами. «Оценка боли остается главной проблемой для педиатрических и других категорий пациентов, которые не могут сами описать испытываемый уровень дискомфорта», — пишут авторы метода в статье в журнале Nature.

Разработчики провели испытание своей системы, чтобы определить ее эффективность. В эксперименте приняли участие 20 добровольцев, которые были разделены на четыре равные группы: хозяева кошек, студенты ветеринарного факультета, ветеринарные сестры и ветеринарные врачи. Шкала показала высокий уровень межэкспертной надежности. То есть участники эксперимента при помощи системы пришли к одинаковым оценкам состояния животных. При этом результаты всех групп во многом совпали с «золотым стандартом» — диагнозами группы профессиональных ветеринаров.

Шкала оценки мимики кошек учитывает пять показателей: положение ушей, степень напряжения глазных орбит, напряжение морды, положение усов и положение головы. Каждый из показателей оценивается баллами от 0 до 2. Например, свободно висящие и изогнутые усы соответствуют 0 баллов, немного искривленные или прямые усы — 1 баллу, а прямые и выдвинутые вперед — 2 баллам. Если результаты подсчетов по всем показателям превышают 3 балла, то кота следует показать ветеринару.

Участникам эксперимента была разослана инструкция с описанием, как пользоваться шкалой. Никакой дополнительной подготовки они не проходили. Всем им предложили с помощью описанного метода оценить по фотографиям состояние 100 кошек. Животных снимали в клетках перед или после болезненных процедур и операций, а также перед или после получения обезболивающих. Болезненные симптомы были у 40% кошек, фотографии которых использовались в эксперименте. Уровень межэкспертной надежности, отражающий совпадения мнений в одной группе, не опускался ниже 80%, а среди студентов даже достиг 88%. При этом максимальное единодушие участники эксперимента продемонстрировали в оценках положения ушей, состояния глазных орбит и положения головы, а вот оценки напряженности морды и состояния усов совпадали значительно реже.

Еще один показатель, отражающий точность предложенной шкалы, — внутриэкспертная надежность. Она определяет, как часто специалист делает одинаковые оценки в идентичных случаях. Все участники эксперимента оказались очень последовательными. Внутриэкспертная надежность простых владельцев кошек и ветеринарных сестер составила соответственно 87 и 81%. А студенты ветеринарных вузов и профессиональные ветеринары последовательны в рамках шкалы на 91%. Все полученные в ходе испытаний параметры показали, что шкала оценки мимики кошек позволяет и специалистам, и обычным людям с высокой точностью диагностировать болевые ощущения у домашних питомцев. Причем возраст и количество кошек, которых содержит человек, не связаны с точностью его диагнозов. А вот женщины замечают кошачье нездоровье значительно чаще мужчин.

Чужая боль

Шкала, о которой идет речь, показала очень высокую точность в ходе исследований в США и Канаде, сообщила Татьяна Краснова, главный врач ветклиник «Белый клык», международный представитель Национальной ветеринарной палаты и основатель «Клуба борьбы с болью» для ветеринарных врачей. Шкала существует уже несколько лет, некоторое время назад ее модернизировали, добавив новые маркеры — они уже стали стандартом. У шкалы много критериев, которые обеспечивают точность диагноза и подходят для большинства кошек. По словам специалиста, ветеринары очень часто используют ее в своей практике.

— Шкала также может помочь и хозяину заметить нарушения здоровья кошки на ранних стадиях и быстрее обратиться к специалисту, — отметила Татьяна Краснова.

Предложенный метод особенно полезен владельцам именно кошек, так как у этих животных не так много иных способов показать свое недомогание, как, например, у собак, пояснила специалист.

Боль — это субъективное переживание и оценка боли, переживаемой другим существом, тоже субъективна, пояснила Софья Пантелеева, доцент кафедры общей биологии и экологии факультета естественных наук НГУ (вуз — участник проекта повышения конкурентоспособности образования «5-100»), старший научный сотрудник Института систематики и экологии СО РАН. По ее мнению, на то, как мы чувствуем боль своих питомцев, может влиять индивидуальный опыт.

Источник

Гельминты у кошек: симптомы, лечение, профилактика

Гельминты, или глисты ― это паразитирующие в организме млекопитающих черви. У домашних кошек они могут обнаружиться, даже если животное никогда не покидает квартиры и питается только готовыми кормами. Дело в том, что большинство видов этих паразитов являются биогельминтами ― их жизненный цикл включает промежуточного хозяина. Поэтому заражение кошек глистами возможно как при поедании зараженной пищи или фекалий больного животного, так и при контакте с распространителями возбудителей (рыбами, членистоногими, пресмыкающимися, насекомыми).

Поскольку из восьми десятков видов гельминтов, паразитирующих на плотоядных, больше трети относятся к зооантропоозным, то есть поражают и животных, и человека, лечить глистов у кошек нужно в том числе и из соображений собственной безопасности.

Виды гельминтов

У кошек обнаруживаются глисты разных видов: круглые, ленточные и плоские. Они отличаются формой, размерами, способами заражения и местом обитания в организме животного.

Нематоды

Круглые черви или нематоды ― самый частый возбудитель гельминтоза у кошек. Эти паразиты имеют веретенообразную или нитевидную форму. К нематодам относятся:

Цестоды

Данные гельминты относятся к ленточным червям. У кошек встречается два вида таких глистов: дифиллоботриум (лентец широкий) и дипилидиозис (огуречный цепень). Первый достигает до 1,5 м в длину, второй ― 70 см. Тела червей состоят из небольших сегментов ― члеников, которые снабжены индивидуальной пищеварительной и репродуктивной системами и способны самостоятельно передвигаться. В передней части тела паразита имеются крючки, с помощью которых он закрепляется в теле животного.

Цестоды ― биогельминты, промежуточным хозяином для них служат блохи и власоеды, в теле которых червь достигает промежуточной стадии жизненного цикла. Заражение кошки глистами происходит при вылизывании шерсти, на которой есть блохи, или поедании зараженного цестодами грызуна.

Паразитируют ленточные глисты в кишечнике, реже ― в легких, питаются нутриентами, которые поступают в организм кошки. И дифиллоботриум, и дипилидиозис вызывают у кошек воспаление и аллергическую реакцию в виде красной сыпи, а при тяжелой форме инвазии ― непроходимость кишечника и потерю веса вплоть до кахексии (истощение) и смерти.

Трематоды

У кошек обнаруживаются несколько видов глистов-трематод:

Симптомы и признаки глистов у кошек

В зависимости от вида глистов и обширности инвазии гельминтоз у кошек может протекать без внешних признаков или же иметь ярко выраженные симптомы. Общими признаками, указывающими на возможное наличие у кошки глистов, считаются:

Отличительные симптомы определенных видов глистов:

Поскольку описанные симптомы могут иметь место и при других заболеваниях, важно своевременно провести дифференциальную диагностику

Диагностика

Первичный диагноз ветеринар может поставить на основании анамнеза, собранного хозяином животного: когда у кошки были замечены первые признаки болезни, и какие именно, что могло стать причиной их появления, чем питается животное, где содержится.

Для уточнения диагноза и определения типа гельминтов кошке потребуется провести анализы каловых масс, крови и мокроты. В некоторых случаях, чтобы не только выбрать подходящее лекарство, но и точно рассчитать его дозировку, врач может направить кошку на рентгенографическое или ультразвуковое исследование, чтобы определить степень поражения внутренних органов гельминтами.

Лечение глистов у кошек

Глисты у кошек сегодня лечатся просто и успешно. Обычно врач прописывает противоглистные средства, механизм действия которых заключается в разрушении клеточных мембран и нарушении внутриклеточных метаболических процессов, что приводит к быстрой гибели паразита. Однако в организме животного могут остаться яйца гельминтов, на которые глистогонное не действует, поэтому прием препарата, как правило, повторяют еще раз через две недели (за такой срок яйца и личинки превращаются во взрослую особь). После этого кошке проводят контрольный анализ кала на глисты.

Средства от глистов для котов

Наиболее эффективными для лечения кошек от глистов считаются препараты широкого спектра действия, которые действуют одновременно на несколько видов гельминтов:

Лучшими глистогонными препаратами для котят считаются суспензии и капли на холку Диронет Джуниор, уничтожающие круглых и ленточных глистов.

Средства от глистов для котов выпускаются в виде таблеток, капсул и суспензий для внутреннего употребления, а также гелей и спреев для наружного применения, но последние используются чаще как профилактические.

Профилактика глистов у кошек

Меры профилактики гельминтоза у кошек включают плановую дегельминтизацию и соблюдение санитарных норм содержания. Глистогонить кошку рекомендуется каждые 3-4 месяца, особенно это касается котов, которые могут выходить на улицу. Котят можно глистогонить с трехнедельного возраста. Давать кошкам лекарство от глистов желательно также перед плановыми прививками. Если вводиться будет комплексная вакцина, глистов изгоняют за 10 дней перед первой инъекцией. Если в доме содержатся несколько животных, глистогонить их желательно одновременно.

Что касается требования к содержанию и питанию, риск заражения кошки глистами намного снизят:

Если у вашей кошки обнаружились симптомы гельминтоза, рекомендуем обратиться в нашу клинику. Вы можете написать дежурному администратору или позвонить по контактному телефону, мы работаем круглосуточно. Врач осмотрит животное, проведет необходимые обследования и назначит лечение. В случае, если симптомы заболевания достаточно серьезны (понос, рвота, сильная слабость, высокая температура, подозрения на кишечную непроходимость), обратиться к ветеринарному врачу следует не откладывая.

Источник

Диагностика при синдроме свободной жидкости в плевральных полостях у кошек

Введение

Анатомия, физиология и патофизиология

Плевральный выпот – это не болезнь, а синдром, который может проявляться при различных болезнях по разным причинам, при этом несколько причин могут сочетаться.

Клинические признаки

Дыхательную недостаточность можно оценить по частоте дыхательных движений в покое за 1 минуту (менее 24 – это норма, а более 27 – дыхательная недостаточность). Данные показатели могут быть использованы владельцами животных для мониторирования изменений состояния их питомца при лечении.

Дыхательная недостаточность – это неотложное состояние! Важно определить признаки дыхательной недостаточности как можно быстрее при поступлении кошки в клинику.

Лучше всего подготовиться к появлению такого пациента заранее, например после телефонного звонка хозяев кошки или предупреждения администратора клиники о поступившем экстренном пациенте. Все манипуляции с таким животным нужно совершать, не забывая о его крайне нестабильном состоянии! В любой момент любое действие с кошкой может спровоцировать ухудшение ее состояния и привести к смерти. Типичные провоцирующие факторы: душное помещение, вынужденное соседство с другими животными, стресс (при извлечении животного из переноски, при виде доктора, при осмотре), смена положения тела, болезненные манипуляции.

Тоны сердца и легочные звуки в вентральной части грудной клетки приглушены. Границы приглушения зависят от количества жидкости в плевральных полостях.

Перкуссия
Лучше всего, если кошка находится в стоячем положении. Перкутировать нужно в области нескольких межреберьев, на нескольких уровнях (от позвоночника к грудине или наоборот) (рис. 3). Наличие жидкости приглушает, притупляет перкуторный звук. Поскольку жидкость занимает нижележащие отделы плевральных полостей, часто удается определить горизонтальную границу приглушения звука (по сути – уровень жидкости). При одностороннем скоплении жидкости притупление перкуторного звука выявляется с соответствующей стороны.

Рентгенография при поступлении
Кошка с выраженной дыхательной недостаточностью может умереть при попытке уложить ее в боковое положение или в положение на спине. Поэтому в случаях выраженной дыхательной недостаточности и при подозрении на свободную жидкость в плевральных полостях (по результатам осмотра, аускультации и перкуссии) во многих руководствах рекомендуется делать рентгенографию только после торакоцентеза, аспирации жидкости и стабилизации животного.
Возможно, стоит ограничиться снимком в том положении, в котором кошке проще дышать. Если она лежит в положении на животе, значит, стараясь не напугать животное и не заставляя ее занимать положение для получения идеальной укладки, следует сделать снимок в дорсовентральной проекции. Смысл снимка при поступлении пациента – подтвердить наличие свободной жидкости в плевральных полостях. Озадачиться поиском других симптомов можно будет после того, как жидкость будет аспирирована и кошка начнет нормально дышать.

Рентгенография после аспирации жидкости
Крайне сложно аспирировать всю плевральную жидкость полностью. Как правило, этого не требуется, поскольку остаток жидкости объемом 40–50 мл практически не приводит к дыхательной недостаточности. Считается, что при рентгенографии грудной клетки средней кошки можно уверенно диагностировать свободную жидкость в плевральных полостях, если ее объем больше 50 мл.
Анализируя полученные рентгенограммы, нужно учитывать положение животного во время снимка и то, что свободная жидкость под действием силы тяжести смещается в нижние отделы плевральных полостей, тогда как наполненные газом легкие «всплывают» вверх.

Небольшое количество свободной жидкости в плевральных полостях проявляется заполнением междолевых вырезок легких (фото 3). Места расположения междолевых вырезок зависят от укладки животного при рентгенографии (рис. 4).

Есть вероятность того, что даже после хорошо выполненной аспирации жидкости рентгенография не покажет ничего, кроме остаточного количества жидкости и ателектазированных участков легких. Однако нередко удается обнаружить признаки опухолевого процесса в средостении, ребрах, легких (фото 4)
Помимо поиска патологических изменений, рентгенография после торакоцентеза необходима еще по двум причинам:
1) для оценки остаточного количества жидкости (что может быть полезно при отслеживании динамики накопления жидкости, фото 5);
2) для контроля отсутствия свободного газа в плевральных полостях, который мог появиться там после торакоцентеза.
Полезными иногда могут оказаться рентгенограммы в разных положениях в горизонтальном луче, т.к. жидкость стекает вниз и при снимке в горизонтальном луче перестает закрывать расположенные выше участки легких и средостения, однако, к сожалению, не все рентгеновские аппараты позволяют делать такие снимки.
Массы в средостении могут быть ошибочно приняты за свободную жидкость в плевральных полостях (фото 6).

Видео 1. Флотация доли легкого при наличии свободной жидкости в грудной полости. Кошка с хилезным содержимым в грудной полости, на видео хорошо видно движение доли легкого с нарушенной воздушностью.

В норме при ультразвуковом исследовании грудной клетки такие мягкие ткани, как кожа, подкожный жир и мышцы, визуализируются в виде слоистых структур различной эхогенности. Ребра визуализируются как гиперэхогенные структуры с гладкой поверхностью и интенсивной акустической тенью. Прослойка жидкости визуализируется в В-режиме при использовании высокочастотного линейного датчика. Мы видим такие эффекты, как скольжение легкого (англ. lung sliding; скольжение висцеральной плевры) и А-линии.
При наличии плеврального выпота наблюдается анэхогенное или эхогенное содержимое, отделяющее легкие от грудной стенки (фото 10). В зависимости от эхогенности жидкости можно предположить ее характер. Транссудат, модифицированный транссудат и лимфа, как правило, гипо- или анэхогенны. При кровотечении и экссудате выпот более эхогенный. Белок и фибрин могут свободно флотировать в жидкости или присоединяться к органам и тканям средостения и имитировать новообразования. Данные включения не всегда поддаются цветному доплеровскому картированию и требуют дальнейшего наблюдения. При хроническом плевральном выпоте могут визуализироваться нити фибрина и спайки, представляющие собой гиперэхогенные подвижные тяжи. При подозрении на наличие карманов с жидкостью исследование надо проводить в разных положениях животного.
В М-режиме плевральный выпот в малом количестве может визуализироваться как (так называемый) синусоидальный признак – легкое, находящееся под слоем жидкости в М-режиме, движется в такт дыханию, вследствие чего на сонограмме визуализируются «гиперэхогенные холмы на темном фоне» (фото 11).

Под контролем УЗИ можно делать торакоцентез и аспирировать жидкость (фото 12).
Торакоцентез – это пункция плевральной полости с диагностической (взятие образца жидкости для лабораторной диагностики) и терапевтической (устранение причины дыхательной недостаточности) целями. Техника торакоцентеза подробно описана в «конспекте».

Лабораторное исследование жидкости
Жидкость, полученную при аспирации, можно разделить на несколько основных типов. Установление типа жидкости позволяет сделать выводы о причине ее образования (таблица типов плевральной жидкости приведена в «конспекте»). Не всегда тип жидкости можно однозначно классифицировать. Тип жидкости может изменяться с развитием болезни.

Компьютерная томография
Этот метод во многих случаях позволяет выявить причины появления жидкости. При КТ (в отличие от рентгенографии) жидкость, имеющаяся в плевральных полостях, не является препятствием для диагностики.
С помощью КТ можно визуализировать объемные образования легких, плевры, средостения.
КТ-ангиография дает возможность исследовать магистральные и легочные сосуды. Это необходимо при подозрении на тромбоэмболию легочных артерий, заворот доли легкого и обструкцию краниальной или каудальной полой вены (фото 13, видео 2).
КТ-лимфография позволяет исследовать грудной лимфатический проток.
Во время КТ-исследования можно провести биопсию интересующих объектов с поэтапным введением иглы и КТ-контролем ее положения.

Видео 2. КТ-ангиография кошки с хилотораксом.

Источник

Лейкоплакия вульвы

Лейкоплакия вульвы представляет собой изменения клеток в результате их ороговения на слизистой вульвы. Как правило, выявление патологии происходит с наступлением климакса, однако может развиваться у женщин более молодой категории.

Почему возникает лейкоплакия вульвы?

Причины возникновения лейкоплакии вульвы до сих пор до конца не изучены. Существует несколько теорий происхождения данного заболевания. Так, к возможным причинам относят:

Лейкоплакия вульвы. Симптоматика

В начальной стадии зачастую не возникает никаких тревожных сигналов. В некоторых случаях пациентки жалуются на легкое покалывание и ощущение «ползающих мурашек». Нередки случаи, когда уже в начале заболевания женщин начинает беспокоить ярко выраженный зуд в области половых органов. Однако, если вовремя не происходит диагностирование патологии, у женщины заболевание прогрессирует и тогда ведущими симптомами становятся:

Важно отметить, что симптоматика может возникать в качестве отдельных локальных ощущений, либо проявляться комплексно. Однако подобные признаки могут так же указывать и на возникновение другого заболевания, поэтому важно обратиться за помощью к специалисту и не заниматься самолечением.

Обследование

Для начала специалист должен собрать максимально подробный анамнез, опрашивая пациента. Далее проводится плановый осмотр и на основе его результатов будет составлен дальнейший план действий. В качестве основных инструментов можно выделить следующие методы:

Вульвоскопия. С использованием кольпоскопа и специальных проб специалисты выявляют наличие патологических изменений на слизистой вульвы.

Биопсия. Если найдены сомнительные участки, которые могут в будущем стать дальнейшим развитием болезни, небольшую часть образования берут на анализ.

Проба Шиллера. Ткани, которые были повреждены ранее, окрашивают специальным раствором. Участки, которые уже подвержены заболеванию, остаются неокрашенными.

Мазок на цитологию. Помогает своевременно предупредить появление онкологического образования.

При использовании нескольких методик, вероятность своевременного диагностирования приближается к 100%.

Лейкоплакия вульвы. Принципы лечения

Диагноз трудно поддается лечению. На практике чаще всего используют консервативные методы. Терапия направлена на ликвидацию воспалительных изменений в области вульвы, улучшение трофики тканей, снятие психоэмоционального напряжения и устранение зуда.

Невозможно обойтись без медикаментозной терапии. Терапия проводится местная с помощью специальных мазей. Длительность терапии составляет около 3 месяцев.

Из немедикаментозных методов лечения применяют лазерную терапию, иглорефлексотерапию, ультразвуки и УФО (ультрафиолетовое облучение).

Если наблюдается гормональный дисбаланс, могут выписываться специальные препараты для его восстановления, а также нормализации метаболических процессов.

Не менее важно наладить иммунитет. Чтобы в будущем не возникало сложностей с зачатием, специалисты зачастую направляют пациента на физиотерапию. Она помогает улучшить упругость мышечных групп и восстановить эластичность.

Важно принять во внимание, что в процессе разработки программы лечения, каждый специалист учитывает возрастную категорию пациента, сопутствующие заболевания, давность и распространенность лейкоплакии вульвы.

Хирургическое лечение в настоящее время практически не используется ввиду высокой вероятности рецидива, косметических дефектов и осложнений. В редких случаях, по строгим показаниям, могут применятся лазерная абляция или криодеструкция.

Далее будет проходить процесс реабилитации. Для его ускорения важно выполнять рекомендации врача: не принимать горячую ванну, осуществить корректировку приемов питания и выбирать полезные продукты, исключая жирную, соленую и острую пищу. В домашних условиях потребуется в точности и по часам выполнять гигиенические мероприятия.

Источник

Летальные инфекции кошек. Принципы диагностики и профилактики

Среди всей инфекционной патологии кошек существует три вирусных заболевания, которые стоят особняком от всех прочих, поскольку являются летальными, то есть неизлечимыми. К ним относятся вирусный иммунодефицит (ВИК, Feline immunodeficiency, FIV), вирусный лейкоз (ВЛК, Feline leukemia, FeLV) и инфекционный перитонит кошек (ВПК, Feline infectious peritonitis, FIP).

Однако, возбудители этих опасных заболеваний не всегда вызывают клиническое проявление болезни. В этом состоит основная сложность в 1) диагностике, 2) интерпретации результатов исследований и 3) прогнозировании этих заболеваний. В связи с этим практикующий ветеринарный специалист должен иметь в виду следующие основополагающие принципы:

В этой лекции рассмотрены основные свойства вирусов, эпизоотология и патогенез заболеваний, представлена информация о формировании иммунного ответа у кошек, основные принципы контроля и профилактики, а также применение симптоматических и терапевтических средств.

I. Вирусный лейкоз кошек

1. ВИРУСНЫЙ ЛЕЙКОЗ КОШЕК (ВЛК)

1.1. Свойства вируса

Геном FeLV состоит из трех основных генов:

Вирус лейкоза FeLV не долго может существовать вне организма хозяина и легко разрушается дезинфицирующими средствами, мылом, нагреванием и высушиванием. Передача вируса посредством контакта маловероятна. Вирус может недолго сохраняться во влажных условиях при комнатной температуре, так что есть возможность ятрогенной передачи через загрязненные иглы, хирургические инструменты или при переливании крови.

1.2. Эпизоотология

За последние 25 лет распространенность и значение инфекции в Европе значительно уменьшилась в связи с наличием надежных диагностических тестов, специальных исследований, информационных программ по образованию ветеринарных специалистов и появлением высоко эффективной вакцины против лейкоза кошек.

1.3. Патогенез

1.4. Иммунитет

1.4.1 Пассивный иммунитет

1.4.2. Активный иммунитет

1.5. Клинические признаки

1.5.1. Иммуносупрессия (подавление иммунитета)

1.5.2. Анемия

1.5.3. Лимфома

Различные формы лимфом были классифицированы в соответствии с анатомическим расположением:

1.5.4. Другие заболевания, связанные с вирусным лейкозом

Кроме вышеописанных заболеваний при лейкозе зарегистрирована и другая патология, в том числе гемолитическая анемия, гломерулонефрит и полиартрит.

1.6 Диагностика

1.6.1. Прямые методы обнаружения

1.6.1.2. Иммунная хроматография

1.6.1.3. Иммунофлуоресцентный анализ

1.6.1.4. Культивирование вируса

1.6.1.5. ПЦР для обнаружения провируса (ДНК)

Проведение ПЦР для выявления провируса может быть полезным у кошек с отрицательным иммунохроматографическим тестом.

1.6.1.6. ПЦР для обнаружения вирусной РНК

1.6.2. Косвенные методы обнаружения

Несмотря на то, что возможно определять антитела к вирусу FeLV, результаты такого анализа трудно интерпретировать, так как много кошек имеют антитела к эндогенному вирусу. Поэтому такие тесты в настоящее время не имеют клинического значения.

Есть тесты на вирус нейтрализующие антитела, но они не получили широкого распространения (в основном, используются в Великобритании).

1.6.3. Интерпретация результатов исследований

Наиболее широко используемые тесты для диагностики инфекции FeLV на практике – это иммунохроматографические экспресс тесты для определения антигена. Распространение лейкоза кошек постепенно сокращается, однако во многих европейских странах существует тенденция к увеличению ложно положительных результатов. Поэтому сомнительный и положительный результат у здоровой кошки должен быть всегда подтвержден, желательно с использованием ПЦР. Положительный результат у кошки с клиническими признаками инфекции является более надежным, поскольку у таких животных распространение вируса, вероятно, будет значительно выше.

Кошки с положительным результатом могут преодолеть виремию в течение 2-16 недель, в редких случаях дольше. Поэтому каждая положительно реагирующая кошка без клинических признаков должна быть изолирована и через несколько недель или месяцев исследована повторно.

Таким образом, первоначально кошек можно проверить иммунохроматографией на наличие вирусного белка р27. Если результат окажется отрицательным по любой причине, тест необходимо повторить в квалифицированной лаборатории, используя альтернативный формат – ПЦР для выявления провируса.

1.7. Контроль и лечение

1.7.1. Общие принципы

FeLV-инфицированные кошки должны содержаться только в помещении, чтобы предотвратить распространение вируса. Кроме того, это снизит риск заражения другими инфекциями, которым подвержены кошки с иммуносупрессией. Если такие животные попадают в стационар ветеринарной клиники, они должны находиться в отдельных клетках. Следует учитывать, что их следует держать подальше от кошек с другими инфекционными заболеваниями, особенно респираторными.

Будет разумным избегать кормления сырым мясом, которое может представлять опасность в связи с возможной бактериальной или паразитарной инфекцией, к которым FeLV-позитивные кошки более восприимчивы.

FeLV-инфицированные кошки с бессимптомным течением должны проходить клинический осмотр, по крайней мере, каждые шесть месяцев. Полный анализ крови (морфологический, биохимический) и анализы мочи следует периодически контролировать, в идеале 1-2 раза в год.

Коты и кошки без ретровирусов должны быть стерилизованы, чтобы минимизировать риск заражения вирусом. Операции, как правило, хорошо переносятся FeLV-инфицированными кошками с бессимптомным течением болезни.

1.7.2. Лечение

1.7.2.1. Поддерживающая терапия

Если инфицированная вирусом лейкоза кошка заболела, необходимо быстрое и точное выявление конкретных заболеваний, чтобы оказать раннее терапевтическое вмешательство и обеспечить успешный исход лечения. Таким образом, для таких животных рекомендуется более масштабные диагностические манипуляции, чем для неинфицированных кошек. Многие кошки с ретровирусной инфекцией хорошо реагируют на соответствующие препараты. Кортикостероиды и другие препараты, подавляющие иммунитет или костный мозг, следует избегать.

Очень важна ветеринарная помощь для кошек с виремией. Многим, возможно, потребуется инфузионная терапия. Некоторые специфические осложнения болезни хорошо реагируют на лечение, например, вторичные бактериальные инфекции, особенно гемобартенеллез, при котором следует назначать доксициклин. Если присутствует стоматит / гингивит, следует рассмотреть применение кортикостероидов, чтобы улучшить аппетит.

Существует мало доказательств, подтверждающих влияние иммуномодуляторов на здоровье и долголетие FeLV-инфицированных кошек.

Тем не менее, было высказано предположение, что некоторые из этих средств могут принести пользу инфицированным животным за счет восстановления ослабленной иммунной функции, что позволяет пациенту контролировать вирусную нагрузку.

1.7.2.3. Противовирусные препараты

Применение interferon-w (106 МЕ / кг подкожно 1 раз в день в течение 5 дней, затем повторить курс еще 2 раза с интервалом несколько недель) показало статистически значимые различия в продолжительности жизни по сравнению с необработанными кошками.

1.8. Вакцинация

Длительное наблюдение за вакцинированными кошками показало, что низкий уровень виремии РНК и сохранение низкого уровня провирусной ДНК можно рассматривать как клинически не значимые факторы, и таких животных следует считать «защищенными».

В большинстве случаев лейкоз должен быть включен в плановую вакцинацию кошек. Это обеспечит хорошую защиту от потенциально опасных для жизни инфекций, а польза для большинства кошек значительно превышает любые риски, связанные с побочными эффектами.

В ситуациях, когда возможность контакта кошки с вирусом лекоза сведена к минимуму, вакцинация не требуется. На принятие решения о необходимости вакцинации может повлиять географический фактор. Так, в некоторых европейских странах лейкоз в значительной степени был ликвидирован. Что касается Ростовской области, в нашем регионе лейкоз встречается достаточно часто, как и иммунодефицит.

Тем не менее, жизненные обстоятельства у владельцев животных могут меняться, могут возникнуть ситуации с потенциальным риском заражения лейкозом. В связи с этим, необходимо рекомендовать владельцам кошек вакцинировать своих питомцем перед переездом или путешествием. Особое внимание необходимо уделять котятам, поступающим на первичную вакцинацию.

1.8.1. Первичная вакцинация

Если статус кошки по лейкозу неизвестен, необходимо провести исследование на антигенемию (экспресс тест, ПЦР) до вакцинации, чтобы избежать неэффективного использования препарата. Если заражение лейкозом до вакцинации маловероятно, исследование может быть не обязательным (например, котята получены от кошки и кота, которые не имели контактов с другими кошками и не являются инфицированными вирусом лейкоза).

1.8.21 Ревакцинация

Опубликованных данных, подтверждающих, что использование вакцин против лейкоза защищают кошек на срок более года, нет. Таким образом, большинство производителей вакцин рекомендуют проводить ревакцинацию ежегодно. Однако, учитывая снижение чувствительности к инфекции с возрастом, у кошек старше 3-4 лет будет вполне достаточным проводить ревакцинацию каждые два-три года.

1.9. Контроль в конкретных ситуациях

1.9.1. Владельцам, у которых 5 и более кошек

Если в группе есть хотя бы одна кошка с лейкозом, все остальные животные должны быть обязательно проверены. В том случае, если обнаруживаются еще положительно реагирующие животные, необходимо изолировать их. Отрицательно реагирующих следует периодически контролировать на предмет виремии. Несмотря на высокую эффективность вакцины, все же рекомендуется не ограничиваться только вакцинацией.

1.9.2. Приюты

С учетом распространения инфекции в Ростовской области рекомендуется проводить тотальный контроль вновь поступающих в приют животных на предмет лейкоза. Больных кошек, у которых подтверждено наличие вируса, следует подвергать эвтаназии. Некоторые приюты создают специальные условия для содержания инфицированных кошек, однако в таких случаях необходимо иметь полную уверенность в том, что они не представляют опасности для других животных.

Следует избегать возможности распространения вируса. В идеале, кошки с различным статусом должны содержаться изолированно. Следует рассмотреть вакцинацию неинфицированных животных.

1.9.3. Питомники

В питомниках распространенность лейкоза сравнительно ниже. Европейские страны достигают этого в основном за счет рутинной проверки и удаления положительно реагирующих кошек. В питомниках рекомендуется регулярное тестирование, 1-2 раза в год. Обязательно должен быть ограничен контакт с кошками из других учреждений. Если кошки имеют доступ на улицу и/или возможность контакта с другими животными, статус которых не известен, необходимо их вакцинировать.

1.9.4. Вакцинация кошек c ослабленным иммунитетом

1.9.4.1. Инфицированные кошки

Вакцинация лейкоз-позитивных кошек против лейкоза вообще не приносит никакой пользы.

1.9.4.2. Кошки с вирусным иммунодефицитом

1.9.4.3. Кошки с иммунодефицитными состояниями или хроническими заболеваниями

Существует общее мнение, что кошки с острыми заболеваниями, не должны быть вакцинированы, но животных с хроническим заболеванием, например, почечная недостаточность, сахарный диабет или тиреотоксикоз, необходимо вакцинировать регулярно, если существует риск заражения.

1.9.4.4. Кошки, получающие кортикостероиды или другие иммуносупрессивные препараты

Необходимость вакцинации у таких животных должна обсуждаться индивидуально. В зависимости от дозировки и продолжительности лечения, кортикостероиды могут подавлять иммунный ответ, в частности, клеточный иммунный ответ. Поэтому следует избегать параллельное применение кортикостероидов во время вакцинации.

II. ВИРУСНЫЙ ИММУНОДЕФИЦИТ КОШЕК (ВИК)

2.1. Свойства вируса

Важно знать, что вирус вне организма кошки погибает в течение нескольких минут и легко уничтожается обычными дезинфицирующими средствами, даже мылом.

2.2. Эпизоотология

2.2. Патогенез

Латентная инфекция возникает тогда, когда клетка несет в себе интегрированную копию провируса, но новые вирусные частицы не образуются. Такие инфицированные клетки представляют собой «резервуар» инфекции, которая не поддается влиянию нейтрализующих антител, что создает препятствия для эффективной вакцинации.

В первые несколько дней после экспериментального заражения вирус FIV проникает в дендритные клетки, макрофаги и Т-лимфоциты, а также может быть обнаружен в плазме в течение 2-х недель. Количество вирусных частиц и провирусной ДНК увеличивается в мононуклеарных клетках, достигая максимума на 8-12 неделе после заражения. В течение этого периода отмечаются незначительные или умеренные клинические отклонения, такие как анорексия, депрессия и гипертермия. Они быстро проходят в отличие от генерализованной лимфаденопатии, которая может возникнуть в результате резкого увеличения активных центров инфекции в лимфатических узлах.

2.3. Иммунитет

2.3.1. Пассивный иммунитет

Тем не менее, пассивная передача антител не может защитить котят от вирулентных штаммов. Это касается и вакцинированных кошек, иммунизированных экспериментальной вакциной (Siebelink и соавт., 1995).

2.3.2 Активный иммунитет

2.4. Клинические признаки

Большинство клинических признаков у ВИК-инфицированных кошек не связаны напрямую с вирусом. Поэтому очень важно разобраться в основной причине клинических проявлений заболевания. Во многих случаях клинические признаки будут вызваны вторичной инфекцией, которая должна быть выявлена и соответствующим образом ликвидирована (см. ниже). Сам вирус FIV несет ответственность за иммунодефицит (кошки более восприимчивы к вторичным инфекциям и новообразованиям) или напротив стимуляцию иммунной системы, в редких случаях вирус может привести к неврологическим заболеваниям.

Иммунодефицит и / или иммуностимуляция наиболее часто проявляются в виде хронического гингивостоматита, хронического ринита, увеличения лимфатических узлов, гломерулонефрита и потери веса.

2.5. Диагностика

При клиническом обследовании кошек необходимо учитывать такие факторы, как нейтропению, лимфопению, а также анемию.

Цитопении связаны с подавлением костного мозга вирусом иммунодефицита.

2.5.1. Прямые методы обнаружения

2.5.1.1 Культивирование вируса

Очень надежный метод диагностики заболевания. Лимфоциты периферической крови после специальной подготовки культивируют на клеточных культурах течение 2-3 недель. Эта процедура является трудоемкой и используется очень редко.

2.5.1.2 Полимеразная цепная реакция (ПЦР)

2.5.2. Косвенные методы обнаружения, серология

Существует ряд серологических тестов, определяющих вирусные структурные белки (например, белок капсида p24 и gp41). Такие тесты выпускаются в виде ИФА наборов или иммунохроматографии. «Золотым стандартом» для диагностики ВИК является Вестерн блоттинг, который используется для подтверждения сомнительных результатов.

И иммуноферментный анализ, и иммунохроматографические тесты, как правило, вполне применимы для диагностических целей, но они имеют свои ограничения, в частности специфичность из наиболее часто используемых тестов, как правило, ниже 100%, что особенно важно в странах с низкой распространенностью заболевания.

Любой положительный результат на территориях и ареалах с низкой распространенностью вируса (например, молодые животные, кошки, содержащиеся в помещении, чистопородные кошки) должен быть подтвержден, например, Вестерн-блоттингом. Положительный результат у кошки из группы риска (например, бездомные животные, кошки старше 5 лет, коты), вероятно, будет положительным, потому что частота истинно положительных результатов превышает в этом случае частоту ложноотрицательных в этой группе. С другой стороны, ложные отрицательные результаты могут быть получены в начале инфекции, когда кошки уже имеют провирус, но остаются серонегативными в течение нескольких недель и даже месяцев. Кроме того, ложно отрицательные результаты могут быть получены также в терминальной стадии заболевания, что связано с иммунодефицитом, а также при высокой вирусной нагрузке, так как может произойти секвестрация антител.

ПЦР может быть использована для обнаружения вируса у серонегативных животных.

Вакцинация кошек против вируса иммунодефицита кошек (FIV) с использованием инактивированных штаммов приводит к быстрому и стойкому образованию антител.

В такой ситуации рекомендуется определение количества CD4 + и CD8 + лимфоцитов. Однако из-за сложности этих исследований и тот факт, что значение этих показателей не был известен до заражения, означает, что этот метод не является в настоящее время клинически значимым.

2.6. Контроль, профилактика и лечение

2.6.1 Прогноз для ВИК-инфицированных кошек

2.6.2 Профилактика

Одной из наиболее важных профилактических мер по охране здоровья пациента является защита кошки от других инфекций. У ВИК инфицированных кошек вторичная инфекция может не только вызвать клинические признаки, но и привести к прогрессированию иммунодефицита. Кошки, содержащиеся в изолированном помещении, например, в квартире, имеют минимальный риск заражения ВИК и другими инфекциями, большинство из которых распространяется посредством контакта с другими животными. В некоторых питомниках, в которых некоторые инфекционные заболевания являются эндемичными, внимание должно быть уделено изоляции ВИК-инфицированных кошек.

Кошки с бессимптомным течением ВИК должны быть стерилизованы. Это поможет уменьшить агрессию у котов и риск передачи инфекции. Кроме того, это также поможет уменьшить количество нежелательных контактов с другими кошками.

2.6.2.3 Регулярный ветеринарный контроль

ВИК-инфицированные кошки должны наблюдаться у ветеринарного специалиста, по крайней мере, каждые шесть месяцев. Кроме проведения клинического осмотра обязательно необходимо контролировать вес. Периодически следует проводить анализ крови на морфологические и биохимические показатели крови, а также анализ мочи. Мониторинг CD4 и CD8 не является общедоступным и в большинстве случаев проведение такого исследования не возможно в ветеринарной практике.

ВИК-инфицированные кошки с бессимптомным течением, как правило, хорошо переносят операции, но перед любыми хирургическими и стоматологическими манипуляциями следует использовать парентеральное введение антибиотиков. Допускается содержать ВИК-инфицированных кошек в одном помещении со здоровыми, например, в стационаре, однако, они должны быть расположены в отдельных клетках. В тоже время следует учитывать ослабленный иммунитет и держать их подальше от кошек с другими инфекционными заболеваниями. Ни при каких обстоятельствах ВИК-инфицированные кошки не должны быть размещены в одном помещении с животными с инфекционной патологией, особенно с заболеваниями респираторного тракта.

2.6.2.4 Вакцинация ВИК-инфицированных кошек

Вакцинация ВИК-инфицированных животных является спорным вопросом. Экспериментальные исследования показали, что у кошек с бессимптомной инфекцией в ответ на вакцинацию развивается сильный иммунный ответ, что говорит об эффективности применения вакцины. Тем не менее, не известно, на сколько эффективна вакцинация кошек на более поздних стадиях развития иммунодефицита.

Есть мнение, что вакцинация ВИК-инфицированных кошек может быть не безопасным. Во-первых, стимулирование иммунной системы, связанное с введением вакцины, может привести к прогрессированию иммунодефицита в результате изменения неустойчивого баланса между иммунной системой и вирусом. Так, стимуляция инфицированных лимфоцитов in vitro приводит к репродукции вируса. In vivo, вакцинация хронически инфицированных кошек синтетическим вирусным пептидом приводила к с уменьшению соотношения CD4/CD8. Потенциальные плюсы и минусы вакцинации кошек с иммунодефицитом должны рассматриваться индивидуально. У взрослых кошек, которых вакцинировали ранее, даже несколько лет назад, риск заражения инфекцией низок, так что новой вакцинации лучше избежать. У кошек, имеющих постоянный доступ на улицу риск заражения очень высок, поэтому вакцинация им настоятельно рекомендуется.

Хотя нет никаких научных доказательств того, что ВИК-инфицированные кошки находятся в группе повышенного риска при использовании живых вакцин, следует иметь ввиду, что рекомендуются к использованию инактивированные вакцины. Применение живых вакцин кошкам с иммунодефицитом может спровоцировать клиническое заболевание, поскольку вакцинный антиген может сохранять некоторый патогенный потенциал.

2.6.3 Симптоматическое лечение

Соответствующие симптоматическое лечение ВИК-инфицированных кошек должно быть начато как можно раньше. Для эффективной терапии в первую очередь необходимо установить этиологию вторичной инфекции. Таким образом, у ВИК-инфицированных кошек должны проводиться более объемные диагностические исследования, нежели у неинфицированных. Многие кошки с иммунодефицитом реагируют на терапию также как и неинфицированные, однако в некоторых случаях возникает необходимость использования более агрессивных средств (например, антибиотики).

2.6.4 Специфические терапевтические препараты

2.6.4.1 Противовирусные средства

Большинство противовирусных препаратов, используемых у кошек лицензированы для применения в медицине и предназначены специально для лечения ВИЧ-инфекции. Некоторые из них могут быть вполне использованы для лечения ВИК, однако многие из доступных препаратов являются токсичными для кошек или малоэффективными.

Для подкожных инъекций лиофилизированный препарат следует развести в изотоническом растворе хлорида натрия, чтобы избежать местного раздражения. Для перорального применения можно использовать сироп или желатиновые капсулы. Во время лечения должен регулярно проводиться анализ крови (раз в неделю в течение первого месяца), так как наиболее частым побочным эффектом является нерегенеративная анемия, особенно если используется высокая дозировка. Если значения показателей крови стабильны в течение первого месяца, будет достаточным контролировать кровь раз в месяц. Исследования показали, что ВИК-инфицированные кошки, которых лечили в течение двух лет, хорошо переносят AZT. Иногда в течение первых трех недель возможно снижение гематокрита, однако, даже если лечение продолжается, этот показатель постепенно нормализуется. Если гематокрит падает ниже 20%, рекомендуется прекратить лечение, анемия обычно проходит в течение нескольких дней. К сожалению, как в случае с ВИЧ, в результате мутаций через шесть месяцев после начала лечения возможно возникновение AZT-устойчивых штаммов ВИК.

Иммуномодуляторы или индукторы интерферона широко используются в терапии ВИК-инфицированных кошек. Было высказано предположение, что эти препараты могут помочь инфицированным животным за счет восстановления ослабленной иммунной функции, что позволяет пациенту контролировать вирусную нагрузку. Однако нет достоверных исследований, на сколько иммуномодуляторы или альтернативные препараты обладают благотворным влиянием на здоровье и продолжительность жизни ВИК-инфицированных кошек с бессимптомной или клинически выраженной инфекцией. Неспецифическая стимуляция иммунной системы может быть даже противопоказана при ВИК, так как это может привести к увеличению репликации вируса в результате активации латентно инфицированных лимфоцитов и макрофагов, и, следовательно, может вызвать прогрессирование болезни. Таким образом, неспецифические иммуномодуляторы не должны использоваться у ВИК-инфицированных кошек.

2.7. Вакцинация

Следует отметить, что использование вакцины приведет к ряду проблем, связанных с серологической диагностикой инфекции.

2.8 Контроль в конкретных ситуациях

2.8.1. Владельцам, у которых 5 и более кошек

Целый ряд факторов может повлиять на риск передачи ВИК между кошками в домашних условиях, например, штамм вируса и / или вирусная нагрузка в слюне. В большинстве случаев риск передачи достаточно низкий в социально адаптированных популяциях. Если хотя бы у одной кошки выявлен ВИК, все остальные контактирующие животные должны быть проверены для того, чтобы определить их статус. ВИК в основном передается через укусы во время драк, и если нет драки – с большой вероятностью не будет заражения. Исследования показали, что здоровые кошки, постоянно контактирующие с ВИК-инфицированной, могут оставаться свободными от вируса на протяжении нескольких лет. Желательно, чтобы все кошки были стерилизованы, и важно, чтобы не появлялось новых кошек, так как это может привести к дракам и, следовательно, может произойти передача возбудителя, даже между кошками, которые мирно жили вместе в течение длительного времени.

Однако, если у некоторых животных есть другие инфекционные заболевания, они могут распространяться между другими кошками, в этом случае риск передачи инфекции может быть выше. Поэтому в этой ситуации особое внимание должно быть уделено изоляции ВИК-инфицированных кошек, чтобы избежать распространения вторичной инфекции.

2.8.2. Приюты

ВИК является важным фактором, которым не следует пренебрегать в приютах. В таких популяциях кошек распространенность инфекции достаточно высока, особенно у котов и бездомных кошек.

Рекомендуется всех вновь поступающих в приют кошек проверять на минимальный набор инфекционных заболеваний, в том числе ВИК. В случае, если у ВИК-инфицированной кошки наблюдается клиническая картина болезни, связанная с терминальной стадией инфекции, следует рассмотреть вопрос об эвтаназии.

Серологические тесты не могут быть использованы для надежного выявления инфицированных котят в возрасте до 6-месячного возраста. Положительный результат не подтверждает, что котенок заражен, поэтому котята не должны подвергаться эвтаназии. В этой ситуации следует проводить ПЦР диагностику, хотя она и имеет некоторые ограничения.

В приютах необходим индивидуальный подход к каждому животному, чтобы не допустить перекрестного заражения. Как минимум, ВИК-позитивные кошки должны быть изолированы от не инфицированных.

2.8.3 Питомники

ВИК редко встречается в питомниках, потому что обычно кошки содержатся в хороших условиях, а добросовестные заводчики ежегодно проводят исследования на основные инфекционные заболевания кошек. Новые кошки, а также животные других владельцев должны быть проверены перед вязкой на ВИК. Кошки, которые покинули питомник и потом вернулись, должны быть изолированы на срок до 3-х месяцев и обязательно исследованы на ВИК прежде, чем попадут обратно в питомник.

III. ИНФЕКЦИОННЫЙ ПЕРИТОНИТ КОШЕК

3.1. Свойства вируса

Инфекционный перитонит (FIP) является системным заболеванием, которое индуцированно коронавирусом (FCoV) и является одним из основных летальных инфекций у молодых кошек. Заболевание может регистрироваться у кошек всех возрастов, но чаще всего до 3 летнего возраста.

Коронавирус кошек (FCoV) принадлежит к семейству Coronaviridae. Вирус содержит большое количество генетической информации, это позволяет отнести его к крупнейшим из всех РНК-содержащих вирусов.

По сравнению с вирусами лейкоза и иммунодефицита представитель данного семейства более устойчив в окружающей среде. Коронавирус может сохраняться до 7 недель в высушенном состоянии, поэтому легко передается через лотки с наполнителем, одежду, миски для воды и корма, с обувью и одеждой. Кошка может заразиться даже на выставках. Тем не менее, вирус легко инактивируется обычными бытовыми моющими и дезинфекционными средствами.

3.2. Эпизоотология

Вирус чрезвычайно широко распространен как среди домашних кошек, так и среди диких представителей семейства кошачьих.

Наиболее часто заболевание регистрируют у кошек в питомниках и приютах для животных (от 80 до 100%), а также у владельцев нескольких, как правило, пяти и более кошек.

Кошачий коронавирус (далее FCoV) подразделяют на 2 биологических типа – вирус инфекционного перитонита (FIPV) и вирус энтерита кошек (FeCoV).

Существует теория, согласно которой кишечный коронавирус (FeCoV) мутирует в желудочно-кишечном тракте инфицированной кошки и вызывает системное заболевание – инфекционный перитонит. Сайты мутации до конца не изучены. Эту гипотезу подтверждает наличие вирулентных и авирулентных штаммов вируса, циркулирующих в популяции кошек.

Вторая гипотеза развития инфекционного перитонита предполагает, что любой из 2-х вирусов может вызвать перитонит. Определяющими факторами развития заболевания являются вирусная нагрузка и иммунный ответ кошки. Вполне вероятно, что оба фактора, а именно вирусная генетика и иммунитет, играют определяющую роль в развитии перитонита. В любом случае, было доказано, что вирус, вызывающий перитонит (FIPV) обладает тропностью к макрофагам и моноцитам.

Большинство кошек, инфицированных коронавирусом, продолжают жить без каких-либо последствий. Развитие летального заболевания происходит лишь у 5-12% инфицированных животных.

Возраст является важным фактором риска развития FIP и 70% кошек, у которых развивается заболевание не старше года. Тем не менее, болезнь наблюдается у кошек вплоть до 17 лет.

Распространенность инфекции выше у кошек, ведущих активную половую жизнь, а также у животных, подвергающихся стрессу (операция, переезд, смена владельца, ко-инфекция с FeLV). Поэтому контроль над стрессовыми ситуациями является важной частью профилактики возникновения инфекционного перитонита.

Зачастую кошка является источником инфекции для своих котят. Однако заражение не происходит до 5-6 недельного возраста, что связано с наличием колострального иммунитета. Редко возможно заражение даже в 2-х недельном возрасте.

Основной фактор передачи вируса – фекалии, а основной путь передачи инфекции считается фекально-оральный. Доказано, что кошки могут передавать вирус через слюну (общая миска, вылизывание), а также трансплацентарно.

Чаще всего заражение происходит от кошки с бессимптомным течением заболевания, в то время как вирус выделяется в окружающую среду. Заражение от клинически больной вирусным перитонитом кошки также возможно, однако это не всегда приводит к заболеванию.

Выделение вируса начинается в течение первой недели после инфицирования и может продолжаться недели, месяцы и годы. Небольшая часть кошек способна распространять вирус в течение всей жизни (пожизненное носительство).

3.3. Патогенез

За последнее время произошли изменения в понимании патогенеза инфекционного перитонита. Ранее полагали, что коронавирус локализуется в энтероцитах, а возникновение системной инфекции являлось определяющим в развитии перитонита. Однако было установлено, что в большинстве случаев системная инфекция является субклинической и зависит от степени виремии. Kipar и др. (1999) показали, что коронавирусная инфекция приводит к росту числа моноцитов / макрофагов в гемолимфоидных тканях. Именно эти клетки являются ключевым фактором в развитии FIP. Они играют важную роль в репликации вируса FCoV, формировании гранулематозного поражения и развитии васкулитов при перитоните.

Проведенные сравнительно недавно исследования показали, что у кошек с инфекционным перитонитом отмечается глубокое истощение Т-клеток в периферической крови и лимфе на фоне гипергаммаглобулинемии. Эти результаты указывают на серьезную вирус-индуцированную иммунную регуляцию, при которой возможна неконтролируемая репликация вируса. Несмотря на гуморальный иммунный ответ, антитела не в состоянии распознать инфицированные вирусом клетки. Groot-Mijnes и др. (2005) провели эксперимент, заразив кошек высоко вирулентным штаммом FIPV 79-1146. Первоначально, у всех животных повысилась температура, наблюдали потерю веса и лимфопению. Со временем число лимфоцитов восстановилось, однако у большинства животных зарегистрировали рецидив (увеличение вирусной нагрузки). Увеличение репликации вируса совпала с лихорадкой, потерей веса, а также резким снижением в периферической крови CD4 + и CD8 + Т-клеток. Авторы утверждают, что эффективность начального Т-клеточного ответа критически определяет прогрессирование заболевания и конечный исход болезни. Углубление нашего понимания природы иммунной защиты, ее роли в борьбе с коронавирусной инфекцией является существенным для адекватной профилактики FIP.

3.4. Иммунитет

Колостральный иммунитет защищает котят до 5-6 недельного возраста. Уровень материнских антител начинает снижаться на 6-8 неделю жизни.

Естественный иммунитет является кратковременным, и кошки могут повторно заразиться. Роль гуморального иммунитета в защите от FIP спорна. Кошки наиболее склонны к развитию перитонита при первом контакте с вирусом.

3.5. Клинические признаки

Клинические признаки весьма изменчивы, что обусловлено локализацией васкулита и гранулематозных поражений.

Инфекционный перитонит подразделяют на 2 формы – так называемую влажную и сухую. При влажной (эффузивной) форме основным клиническим признаком является асцит. В случае выпота в грудную полость возможна одышка.

Еще одним признаком, при котором следует исключить коронавирусную инфекцию – это рефрактерная к антибиотикам лихорадка. Кроме того, у инфицированных кошек регистрируют снижение аппетита и потеря веса (не всегда). При сухой форме единственными признаками могут быть лихорадка, анорексия и летаргия, особенно на ранних стадиях заболевания.

При поражении внутренних органов (в зависимости от локализации) при клиническом осмотре возможно выявить

3.6. Диагностика

Диагностика FIP была сложной задачей в течение многих лет. Использование традиционных диагностических инструментов инфекционных заболеваний (например, ПЦР, ИФА, иммунохроматография) для выявления FIP и FCoV привело к замешательству ветеринарных специалистов и необоснованной эвтаназии кошек. Диагностика инфекционного перитонита должна основываться на биологическом поведении вируса. Ключевой особенностью мутантного коронавируса является его способность к репликации в макрофагах и моноцитах. Этот фактор является ключевым и единственным в достоверной диагностике инфекционного перитонита. К сожалению, зачастую решение об эвтаназии принимается на основании косвенных диагностических данных или неэффективности лечения.

Иммуногистохимия является «золотым стандартом» в диагностике вирусного перитонита. Наличие фибринозного и гранулематозного поражения на серозной поверхности, пиогрануломатозный васкулит и периваскулит, пиогрануломатогные поражения в нескольких органах свидетельствуют в пользу вирусного перитонита. Подтверждение диагноза иммуногистохимическим методом возможно в высокотехнологичных испытательных лабораториях. Метод основан на использовании специфических антител для выявления вируса в макрофагах в гистосрезах различных тканей. Иммуногистохимия позволяет обнаружить макрофаги с достаточно большим количеством вируса.

Прямая иммунофлюоресценция также позволяет выявить инфицированные макрофаги в асцитной (плевральной / перикардиальной) жидкости и обладает 100% специфичностью.

Косвенные доказательства инфекционного перитонита кошек

Есть мнение, что если концентрация белка в ликворе превышает 2 г/л, можно подозревать инфекционный перитонит. Но это не всегда так. Полезно сравнивать уровень антител в ликворе и сыворотке. Если их соотношение более 1, можно предположить, что неврологическая симптоматика вызвана коронавирусом.

Первые тесты, которые использовались для диагностики перитонита, были разработаны в 1976 году. Однако до сих пор серологическая диагностика является самой неинформативной. Эти тесты на самом деле выявляют антитела к любому коронавирусу. В связи с этим, высокий процент здоровых кошек является серопозитивным, и у большинства никогда не будет инфекционного перитонита (FIP). Как наличие антител не означает инфекционный перитонит, так и их отсутствие не исключает его. Статистически установлено, что около 10% кошек с клиническим течением FIP не имеют антител к вирусу. С учетом этих фактов, прогностическая ценность теста не является высокой и составляет 67%. Вместе с тем, высокие титры антител (1:1600-1:6400) помогают в диагностике вирусного перитонита.

ПЦР не рекомендуется для диагностики инфекционного перитонита в качестве моно-теста, так как генетически практически не возможно отличить FIPV от FCоV. В связи с этим, положительный результат возможен у 5-50% здоровых носителей.

Рекомендуется использовать Real-time ПЦР, поскольку считается, что уровень РНК может коррелировать с репликацией вируса FCoV и, таким образом, может быть связан с наличием FIP. ПЦР применима для выявления вируса во внутренних органах. Наиболее часто вирус можно обнаружить в печени (48%) и селезенке (42,3%), реже в почках (21,1%).

Результаты ПЦР следует интерпретировать в сочетании с клиническим состоянием кошки. Анализ нельзя использовать в качестве единственного теста для диагностики инфекционного перитонита.

3.7. Лечение

К сожалению, новых данных по лечению вирусного перитонита нет. Терапия должна быть направлена на подавление чрезмерной атаки иммунной системы на ткани организма и повышение способности организма ограничить репликацию вируса.

Из медикаментозных средств возможно использование следующих препаратов:

Преднизолон из расчета 2-4 мг/кг/день, постепенно снижая дозировку каждые 2 недели до оптимальной дозы. Следует учитывать, что преднизолон подавляет гуморальной и клеточный иммунитет, но поможет улучшить качество жизни и аппетит на некоторое время.

Тромбоксан – ингибиторы синтетазы (oragrel HCl, 5 мг/кг 2 раза в день) – тормозит агрегацию тромбоцитов и, как сообщается, улучшает клинические признаки.

Пентоксифиллин (Трентал) (100 мг 2 раза в день) – направлен на лечение васкулитов и часто используется с преднизолоном.

Кошачий рекомбинантный интерферон омега (1M МЕ п/к с преднизолоном). По результатам одного неконтролируемого исследования, проведенного в Японии в 2004 году, у 30% кошек улучшал клиническое течение заболевания. Успех этого препарата у других авторов был не такой красочный. Более поздние исследования, касающиеся применения интерферона с преднизолоном, не дали статистически значимых улучшений в клиническом статусе инфицированных кошек.

Следует иметь ввиду, что выраженной клинической картине заболевания эффективность лечения очень низка. Учитывайте факторы, которые указывают на скорый летальный исход:

3.8. Профилактика и контроль

Несмотря на то, что вирус легко разрушается под действием дезинфицирующих и моющих средств, в обычных условиях в высушенном состоянии он может сохранять вирулентность до 7 недель. В связи с этим вирус очень заразен, даже если в приюте появится одна инфицированная кошки, она способна заразить не менее 90% всех кошек.

Важным аспектом является диагностика, которая и без того осложнена ограниченными диагностическими возможностями в условиях ветеринарных клиник. Так, титр антител к вирусу будет не одинаков при исследовании в разных лабораториях, хотя ложноположительные результаты практически исключены. Что касается ПЦР, то определение РНК вируса в фекалиях не является диагностически значимым для постановки диагноза «инфекционный перитонит», так как примерно 25% серопозитивных кошек выделяют вирус в окружающую среду. ПЦР в реальном времени может быть более полезной, поскольку появляется возможность количественного анализа вирусных частиц. Необходимо иметь ввиду, что выделение вируса с фекалиями не носит постоянных характер, поэтому для выявления носителей исследование методом ПЦР рекомендуется проводить несколько раз с интервалом один месяц. Чтобы объективно утверждать, что кошка не является источником инфекции, следует получить не менее пяти отрицательных результатов в ПЦР при ежемесячном исследовании, или, в том случае, если титр антител составляет менее чем 1:10.

3.8.1. Контроль передачи вируса: гигиена и уход

Ключом к предотвращению инфекционного перитонита является недопущение коронавирусной инфекции. В основном, это достигается путем сепарации инфицированных и неинфицированных животных с соблюдением основных гигиенических норм и правил (см. схема 1).

В питомниках и приютах зарубежных стран принято контролировать уровень антител к вирусу каждые 3-6 месяцев. Если титр составляет 1:20 и менее, кошку помещают в группу серонегативных, и, наоборот, при повышении титра антител, животных изолируют.

Суть гигиенического барьера заключается в предотвращении передачи инфекции в питомнике. Каждая кошка должна содержаться в индивидуальной клетке. Никогда не прикасайтесь к «чистым» животным / миске / лотку после контакта с грязными предметами. Тщательно дезинфицируйте руки. Раздавайте корм перед тем, как делать уборку, а лучше всего, если это будут делать разные люди.

Организуйте расположение животных таким образом, чтобы разграничить животных с инфекционной патологией. Ежедневно делайте осмотр, кормите и убирайте лотки начиная с животных с хирургической патологией и заканчивая кошками с инфекционными заболеваниями. Это полезная практика обычного распорядка в питомнике, основанная на зонировании помещения в зависимости от степени зараженности.

Мы можем случайно стать фактором передачи вируса передавать (руки, обувь или одежду), когда просто передвигаемся по питомнику. Поэтому следуйте простому правилу – мыть руки перед каждым животным. На границах санитарных зон питомника должны располагаться дезковрики.

Котята должны иметь индивидуальные миски, подстилку и лотки, которые используются только для них. Лучше всего для котят использовать миски и лотки другой цветовой гаммы, это поможет избежать путаницы. Очищайте и дезинфицируйте инвентарь и подстилку ежедневно один или два раза в неделю.

Очень важно, чтобы во время кондиционирования воздух в помещение поступал непосредственно с улицы, а не из другого помещения.

3.8.2. ПРОФИЛАКТИКА коронавироза у котят

Было установлено, что котята до 5-6 недель защищены от заражения колостраным иммунитетом. Это позволило получать неинфицированных котят в питомниках, где коронавироз является эндемичным заболеванием. Помимо раннего отъема, следует полностью минимизировать любые стрессовые факторы у кошек.

Схема 2. Протокол для профилактики инфекции у котят

Дезинфицируйте руки с использованием гипохлорита натрия (раствор 1:32)

Источник